Lucigenin

N. catalogoS6824 Lotto:S682401

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Dati tecnici

Formula

C28H22N4O6
Peso molecolare 510.5 Numero CAS 2315-97-1
Solubilità (25°C)* In vitro DMSO 20 mg/mL (39.17 mM)
Water Insoluble
Ethanol Insoluble
In vivo (Aggiungere i solventi al prodotto singolarmente e in ordine.)
Homogeneous suspension
CMC-NA
≥5mg/ml Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.
* <1 mg/ml significa leggermente solubile o insolubile.
* Si prega di notare che Selleck testa la solubilità di tutti i composti internamente e la solubilità effettiva può differire leggermente dai valori pubblicati. Ciò è normale ed è dovuto a leggere variazioni da lotto a lotto.
* Spedizione a temperatura ambiente (I test di stabilità mostrano che questo prodotto può essere spedito senza alcuna misura di raffreddamento.)

Preparazione delle soluzioni stock

Attività biologica

Descrizione Lucigenin (NSC-151912, L-6868) è una sonda fluorescente che esibisce una fluorescenza blu-verde in presenza di radicali anionici superossido e cloruro generati endogenamente nelle cellule.
Target
superoxide anion radical chloride
In vitro

1.1 Preparazione della soluzione stock
Sciogliere 1 mg di Lucigenin in 0,1919 mL di DMSO per ottenere 10 mM di questo composto.
Nota: Si raccomanda di conservare la soluzione stock a -20 0C -80 0C al riparo dalla luce ed evitare cicli ripetitivi di congelamento-scongelamento.
1.2 Preparazione della soluzione di lavoro di questo composto
Diluire la soluzione stock in terreno di coltura cellulare privo di siero o PBS per ottenere 5-10 5M di questa soluzione di lavoro chimica.
Nota: Si prega di regolare la concentrazione di questa soluzione di lavoro chimica in base alla situazione attuale.
Colorazione cellulare
2.1 Preparazione delle cellule.
Per le cellule in sospensione: Centrifugare a 1000 g a 40C per 3-5 minuti e quindi scartare il surnatante. Lavare due volte con PBS, 5 minuti ogni volta.
Per le cellule aderenti: Scartare il terreno di coltura cellulare e aggiungere tripsina per dissociare le cellule e creare una sospensione unicellulare. Centrifugare a 1000 g a 40C per 3-5 minuti e quindi scartare il surnatante. Lavare due volte con PBS, 5 minuti ogni volta.
2.2 Aggiungere 1 mL della soluzione di lavoro di questo composto, quindi incubare a temperatura ambiente per 15 minuti.
2.3 Centrifugare a 400 g a 40C per 3-4 minuti e quindi scartare il surnatante.
2.4 Lavare due volte con PBS, 5 minuti ogni volta.
2.5 Risospendere le cellule con terreno di coltura cellulare privo di siero o PBS, quindi rilevare con un microscopio a fluorescenza.

Protocollo (da riferimento)

Riferimenti

  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9442038/

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